Эволюция средств и принципов оспопрививания

Существуют несколько возможных причин возврата натуральной оспы как эндемического заболевания. Например, возможность сохранения вируса натуральной оспы в активном состоянии в трупах больных, захороненных в районах вечной мерзлоты или эволюционные изменения ортопоксвирусов с появлением более вирулентных штаммов. С момента ликвидации натуральной оспы изменились требования к оспенным вакцинам, что привело к смене принципов оспопрививания. Цель исследования – изучение эволюции средств и принципов оспопрививания для определения дальнейшего направления совершенствования противооспенных средств иммунопрофилактики. Всего за весь более чем 200-летний период использования человечеством активной иммунопрофилактики ортопоксвирусных инфекций было разработано четыре поколения вакцинных препаратов. Первое – дермовакцины, представляющие собой вируссодержащий детрит кожи телят. Второе – в качестве субстрата накопления вируса использовались культуры клеток или куриных эмбрионов. Третье – вакцины, полученные на основе аттенуированных различными способами штаммов вируса вакцины. Четвертое – ДНК-вакцины и субъединичные рекомбинантные вакцины. Среди современных принципов оспопрививания доминирует безопасность (ограничение применения вакцин первого и второго поколений, разработка следующих поколений вакцин, средств и схем безопасного оспопрививания) при сохранении требований эффективности, равной апробированным вакцинам. Замена эпидемически апробированных вакцин препаратами третьего и четвертого поколений обусловила необходимость сравнительной оценки защитной эффективности и безопасности разрабатываемых вакцин. Целесообразно проведение двухэтапного оспопрививания с использованием на первом этапе инактивированных или новых безопасных нереплицирующихся вакцин третьего или четвертого поколений.

1. Львов Д.К., Зверев В.В., Гинзбург А.Л. и др. Натуральная оспа – дремлющий вулкан // Вопр. вирусол. 2008. № 4. С. 36–41.

2. Маренникова С.С., Щелкунов С.Н. Патогенные для человека орто-поксвирусы. М.: KMK Scientific Press Ltd., 1998.

3. Щелкунов С.Н., Щелкунова Г.А. Нужно быть готовыми к возврату оспы // Вопр. вирусол. 2019. № 5. С. 206–214. https://doi.org/10.36233/0507-40882019-64-5-206-214

4. Fenner F. Smallpox and its eradication. Geneva: World Health Organization, 1988.

5. Борисевич С.В., Маренникова С.С., Махлай А.А. и др. Оспа коров: особенности распространения после отмены обязательного оспопрививания // Журн. микробиол. 2012. № 3. С. 103–107.

6. Борисевич С.В., Маренникова С.С., Стовба Л.Ф. и др. Оспа обезьян: особенности распространения после отмены обязательного оспопрививания // Журн. микробиол. 2012. № 2. С. 69–73.

7. Борисевич С.В., Маренникова С.С., Махлай А.А. и др. Вакциноподобные вирусы: особенности циркуляции в Южной Америке // Вопр. вирусол. 2014. № 2. С. 10–14.

8. Nalca A., Rimoin A.W., Bavari S., Whitehouse C.A. Reemergence of monkeypox: prevalence, diagnostics, and countermeasures // Clin. Infect. Dis. 2005. V. 41. P. 1765–1771. https://doi.org/10.1086/498155

9. Vorou R.M., Papavassiliou V.G., Pierroutsakos I.N. Cowpox virus infec-tion: an emerging health threat // Curr. Opin. Infect. Dis. 2008. V. 21. P. 153– 156. https://doi.org/10.1097/QCO.0b013e3282f44c74

10. Щелкунов С.Н. Возможен ли возврат оспы? // Молекулярная медицина. 2011. № 4. С. 36–41.

11. Pennington H. Smallpox and bioterrorism // Bull. WHO. 2003. V. 81. P. 762–767.

12. Бабкин И.В., Щелкунов С.Н. Молекулярная эволюция поксвирусов // Генетика. 2008. № 8. С. 1029–1044.

13. Esosito J.J., Sammons S.A., France A.M., et al. Genom sequence diver-sity and clues to the evolution of variola (smallpox) virus // Science. 2006. V. 313 (5788). P. 807–812. https://doi.org/10.1126/science.1125134

14. Li Y., Carroll D.S., Gardner S.N., et al. On the origin of smallpox: corre-lating variola phylogenics with historical smallpox records // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2007. V.104 (40) P. 15787–15792. https://doi.org/10.1073/pnas.0609268104

15. Маренникова С.С. К 30-летнему юбилею ликвидации натуральной оспы в мире // Журн. микробиол. 2011. № 3. С. 121–124.

16. Fogg C., Lustig S., Whitbeck J.C., et al. Protective immunity to vaccinia virus induced by vaccination with multiple recombinant outer membrane proteins of intracellular and extracellular virions // J. Virol. 2004. V. 78(19). P. 10230–10237. https://doi.org/10.1128/JVI.78.19.10230-10237.2004

17. Henderson D.A. Smallpox: the death of a disease. New York, 2009.

18. Babkin I.V., Babkina I.N. The origin of the variola virus // Viruses. 2015. V. 7(3). P. 1100–1112. https://doi.org/10.3390/v7031100

19. Babkin I.V., Babkina I.N. A retrospective study of the orthopoxvirus molecular evolution // Infect. Genet. Evol. 2012. V. 12. P. 1597–1604. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2012.07.011

20. Васильев В.С. Иммунизация против натуральной оспы: история и перспективы // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2009. №3 (27). С. 20–22.

21. Петров Б.Д. Трехсотлетие указа об оспе (Страницы истории эпидемиологии) // Журн. микробиол. 1981. № 6. С. 117–118.

22. Максютов Р.А., Гаврилова Е.В., Щелкунов С.Н. Разработка современных противооспенных вакцин // Вопр. вирусол. 2011. № 6. С. 5–8.

23. Voigt E.A., Kennedy R.B., Poland G.A. Defending against smallpox: a focus on vaccines //Expert Rev Vaccines. 2016. V. 15(9). P. 1197–1211. https://doi.org/10.1080/14760584.2016.1175305

24. Verardi P.H., Titong A., Hagen C.J. A vaccinia virus renaissance // Human vaccines and immunotherapeutic. 2012. V. 8. P. 961–970. https://doi.org/10.4161/hv.21080

25. Wizer I., Balicer R., Cohen D. An update on smallpox vaccine candidates and their role in bioterrorism related vaccination strategies // Vaccine. 2007. V. 25. P. 976–984. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.09.046

26. Amara R.R., Nigam P., Sharma S., et al. Longlived poxvirus immunity, robust CD4 help, and better persistence of CD4 than CD8 T cells // J. Virol. 2004. V. 78(8). P. 3811–3816.

27. Анджапаридзе О.Г., Чернос В.И. Исследования по совершенствованию оспенной вакцины – вклад в ликвидацию оспы в мире // Вопр. вирусол. 1982. № 4. С. 4–10.

28. Babkin I.V., Babkina I.N. A retrospective study of the orthopoxvirus molecular evolution // Infect. Genet. Evol. 2012. V. 12. P. 1597–1604. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2012.07.011

29. Онищенко Г.Г., Максимов В.А., Воробьев А.А. и др. Актуальность возврата к оспопрививанию: проблемы и перспективы // Вестник РАМН. 2006. № 7. С. 32–38.

30. Frey S.E., Newman F.K., Kennedy J.S., et al. Comparison of the safety and immunogenicity of ACAM1000, ACAM2000 and Dryvax® in healthy vaccinianaive adults // Vaccine. 2009. V. 27 (10). P. 1637–1644. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2008.11.079

31. Мацевич Г.Р. Инактивированная оспенная вакцина. Вопросы профилактических прививок и роль аллергии в вакцинальном процессе. Л. 1969. С. 69–71.

32. Мацевич Г.Р., Свет-Молдавская И.А. Оспенная вакцина, инактивированная γ-лучами, антигенные и иммуногенные свойства // Вопр. вирусол. 1970. № 3. С. 316–322.

33. Перекрест В.В., Мовсесянц А.А., Мухачева А.В. и др. Препараты для специфической профилактики натуральной оспы, зарегистрированные в Российской Федерации // Биопрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2013. № 2. С. 4–13.

34. Fogg C.N. Americo J.L., Lustug S. Adjuvantenhanced antibody response to recombinant proteins correlates with protection of mice and monkeys to orthopoxvirus challenges // Vaccine. 2007. V. 25. P. 2787–2799. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.12.037

35. Fogg C., Lustig S., Whitbeck J.C., et al. Protective immunity to vaccinia virus induced by vaccination with multiple recombinant outer membrane proteins of intracellular and extracellular virions // J. Virol. 2004. V. 78(19). P. 10230–10237. https://doi.org/10.1128/JVI.78.19.10230-10237.2004

36. Воробьев А.А., Подкуйко В.Н., Михайлов В.В., Махлай А.А. Непарентеральные методы иммунизации против оспы // Журн. микробиол. 1996. № 5. С. 117–121.

37. Воробьев А.А., Подкуйко В.Н., Михайлов В.В. Итоги фундаментальных и прикладных исследований по пероральной иммунизации против натуральной оспы // Журн. микробиол. 2002. № 1. С. 12–18.

38. Воробьев А.А., Подкуйко В.Н., Максимов В.А. Пероральная вакцинация против оспы (к вопросу о возврате оспопрививания) // Вестн. РАМН. 2003. № 1. С. 5–10.

39. Максимов В.А., Мельников С.А., Бектимиров Т.А. и др. Выбор и оценка иммуногенности и реактогенности оптимальной иммунизирующей дозы ТЭОВак для первичной иммунизации при испытании вакцины на ограниченной группе взрослых людей // Материалы VI Межгосударственной научно-практической конференции «Санитарная охрана территории государств-участников содружества независимых государств: проблемы биологической безопасности и противодействия терроризму в современных условиях». Волгоград. 2005. С. 257–258.

40. Мельников С.А., Подкуйко В.Н., Хамитов Р.А. и др. Клинические исследования вакцины ТЭОВак в условиях отдаленной ревакцинации // Журн. микробиол. 2005. № 6. С. 29–33.

41. Подкуйко В.Н., Краснянский В.П., Воробьев А.А. и др. Пероральная иммунизация – способ повышения безопасности рекомбинантного вектора (вируса вакцины) // Вестник РАМН. 1993. № 2. С. 39–45.

42. Kidokoro M., Tashiro M., Shida H. Genetically stable and fully effective smallpox vaccine strain constructed from highly attenuated vaccinia LC16m8 // Proс. Natl. Acad. Sci. USA. 2005. V. 102(11). P. 4152– 4157. https://doi.org/10.1073/pnas.0406671102

43. Drexler I., Heller K., Wahren B., et al. Highly attenuated modified vaccinia virus Ankara replicates in baby hamster kidney cells, a potential host for virus propagation, but not in various human transformed and primary cells // J. Gen Virol. 1998. V. 79(Pt 2). P. 347– 352. https://doi.org/10.1099/0022-1317-79-2-347

44. Empig C., Kenner J.R., Perret-Gentil M. Highly attenuated smallpox vaccine protects rabbits and mice against pathogenic orthopoxvirus challeng // Vaccine. 2006. V. 24. P. 3686–3690. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2005.03.029

45. Vollmar J., Arndtz N., Eckl K.M. Safety and immunogenicity of «IMVAMUNE», a promising candidate as a third generation smallpox vaccine // Vaccine. 2006. V. 24 (12). P. 2065–2070. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2005.11.022

46. Vollmar J., Pokorny R., Rapp P. A randomized, double-blind, dose-finding phase II study to evaluate immunogenicity and safety of the third generation smallpox vaccine candidate «Imvamune» // Vaccine. 2010. V. 28. P. 1209–1216.

47. Amara R.R., Nigam P., Sharma S., et al. Longlived poxvirus immunity, robust CD4 help, and better persistence of CD4 than CD8 T cells // J. Virol. 2004. V. 78(8). P. 3811–3816.

48. Wyatt L.S., Earl P.L., Eller L.A., Moss B. Highly attenuated smallpox vaccine protects mice with and without immune deficiencies against pathogenic vaccinia virus challenge // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. V. 101(13). P. 4590–4595. https://doi.org/10.1073/pnas.0401165101

49. Сергеев А.А., Сергеев А.Н., Петрищенко В.А. и др. Реактогенность, безопасность, иммуногенность рекомбинантной бивакцины против оспы и гепатита В в ограниченных клинических испытаниях // Вопр. вирусол. 2004. № 5. С. 22–26.

50. Maksytov R.A., Yakubitskiy S.N., Kolosova I.V., Shchelkunov S.N. Comparing new-generation candidate vaccines against human orthopoxvirus in-fections // Acta naturae. 2017. V. 9. P. 88–93.

51. Yakubitskiy S.N., Kolosova I.V., Maksytov R.A., Shchelkunov S.N. At-tenuation of vaccinia virus // Acta naturae. 2015. V. 7. P. 113–121.

52. Tartaglia J., Perkus M.E., Taylor J., et al. NYVAC: a highly attenuated strain of vaccinia virus // Virology. 1992. V. 188. P. 217–232.

53. Doria-Rose N.A., Haigwood N.L. DNA vaccine strategies: candidates for immune modulation and immunization regimens. // Methods. 2003. V. 31. P. 207–216.

54. Hooper J.W., Custer D.M., Thompson E. Fourgenecombination DNA vaccine protects mice against a lethal vaccinia virus challenge and elicit appropriate antibody responses in nonhuman primates // Virology. 2003. V. 306. P. 181–195.

55. Otero M., Calarota S.A, Dai A., et al. Efficacy of novel plasmid DNA encoding vaccinia antigens in improving currernt smallpox vaccination strategy // Vaccine. 2006. V. 24(21). P. 4461–4470. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2005.08.010

56. Pulford D.J., Gates A., Bridge S.H., et al. Differential efficacy of vaccinia virus envelope proteins administered by DNA: minimisation in protection of BALB/c mice from a lethal intranasal poxvirus challenge // Vaccine. 2004. V. 22(25–26). P. 3358–3366. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2004.02.034

57. Phelps A., Gates A.J., Hillier M., et al. Comparative efficacy of replicat-ing smallpox vaccine strains in a мurine сhallenge мodel // Vaccine. 2005. V. 23(27). P. 3500–3507. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2005.02.005

58. Berhanu A., Wilson R.L., Kirkwood-Watts D.L. Vaccination of BALB/mice with Escherichia coli – expressed vaccinia virus proteins A27L, B5R, and D8L protects mice from lethal vaccinia virus challenge // J. Virol. 2008. V. 82. P. 3517–3529. https://doi.org/10.1128/JVI.01854-07.

59. Crotty S., Feigner P., Davies H., et al. Cutting edge: long-term В cell memory in humans after smallpox vaccination // J. Immunol. 2003. V. 171(10). P. 4969–4973.

60. Борисевич С.В., Михайлов В.В., Бектимиров Т.А. и др. Оценка возможности использования штаммов вируса вакцины для конструирования на их основе рекомбинантной вакцины против СПИДа // ВИЧ СПИД и родственные проблемы. 2001. № 2. С. 72–87.

61. Плясунов И.В., Сергеев А.Н., Сергеев А.А. и др. Клинические исследования рекомбинантной бивакцины «Ревакс ВТ» против оспы и гепатита В в условиях двукратной оральной вакцинации // Вопр. вирусол. 2006. № 2. С. 31–35.